空间消杀如何应对霉菌和芽孢

在食品生产、制药、实验室、仓储等场所，霉菌和细菌芽孢是环境微生物控制中较难处理的两类污染对象。常规消毒能够降低一般细菌数量，却未必能够解决霉菌反复生长和芽孢持续检出的问题。若污染源没有消除、清洁不彻底或消毒参数未经验证，即使频繁开展空间喷雾，也可能只获得短期效果。针对霉菌和芽孢的空间消杀，应按照“识别污染、消除源头、充分清洁、深度消毒、效果验证、持续预防”的顺序展开。消毒剂只是其中一个环节，真正决定控制效果的是整个程序能否形成闭环。

一、首先区分霉菌孢子与细菌芽孢

霉菌孢子与细菌芽孢都能在环境中长期存留，但二者的生物学本质、形成目的和耐受能力并不相同。明确两者的区别，是选择消毒剂和制定空间消杀程序的前提（表1）。

表1  霉菌孢子与细菌芽孢的主要差异

总体而言，细菌芽孢通常比霉菌孢子更难杀灭 [1]。霉菌污染则更容易因潮湿、积尘和有机物残留而反复发生。因此，空间消杀既要重视霉菌污染的源头治理，也要针对细菌芽孢设置经过验证的消毒浓度和作用时间。

二、空间消杀之前必须先控制污染源

霉菌反复出现，通常与墙体渗水、空调冷凝水排放不畅、保温层破损、地面积水和环境湿度偏高有关。如果只清除表面霉斑，却没有解决漏水和结露问题，残留孢子仍会重新萌发。对于已经严重受潮的纸箱、木质垫板、吊顶板和保温材料，应根据污染程度进行更换或隔离，不能完全依赖化学消毒恢复。

芽孢污染则需要重点调查物料、人员、维修工具及气流等输入途径。外包装未经处理便进入受控区域、清洁工具跨区使用、设备维修后未开展全面清洁，都可能使芽孢持续进入生产环境。只有找到污染来源，才能避免深度消毒结束后再次检出同类微生物。污染调查还应结合环境监测记录进行趋势分析。若相邻点位连续出现霉菌或芽孢菌异常，应检查温湿度、清洁记录、设备维护、人员活动和物料变化，而不能简单归因于某一次消毒执行不到位。

三、清洁质量决定深度消毒的基础效果

粉尘、油脂、蛋白质、糖类、培养基残留和其他有机物会遮挡微生物，并消耗消毒剂中的有效成分。设备连接处、地面裂缝、密封条和排水设施内部还可能形成附着层，使消毒剂难以进入污染深处。因此，消毒前应通过擦拭、冲洗等方式去除可见污垢和污染沉积，再清除清洁剂残留。

发现霉斑后，不宜直接进行干刷或压缩空气吹扫，以免大量孢子重新进入空气。较为稳妥的方式是对污染部位实施湿式清除，并同步处理受潮材料。对于芽孢风险区域，机械清洁同样能够显著降低初始污染量，为后续化学消毒创造更有利的接触条件。清洁完成后，应确认表面不存在明显污垢、积液和清洁剂残留。只有消毒液能够直接、充分地接触目标表面，规定的浓度和作用时间才有实际意义。将空间喷雾当作清洁替代手段，容易出现空气检测暂时下降而表面污染依然存在的情况。

四、过氧乙酸适合承担周期性深度消毒

过氧乙酸属于氧化型消毒成分，可通过氧化微生物细胞膜、蛋白质及其他关键结构发挥作用。在适宜浓度和接触条件下，过氧乙酸具有较广的抗微生物作用范围，可用于霉菌高发区域和芽孢风险区域的深度处理。研究表明，芽孢外壳与其过氧乙酸耐受性有关，过氧乙酸还可作用于芽孢内膜和萌发相关结构，从而影响芽孢的完整性及恢复能力 [2]。在产品选择方面，可将环凯凯力克过氧乙酸消毒液Ⅱ纳入周期性深度消毒方案。该产品不用于替代日常清洁，而是在污染物得到充分去除后，承担高风险区域的氧化消毒。实际采用擦拭、喷洒或空间处理前，应核对产品标签、使用说明书和卫生安全评价报告载明的适用范围，工作液浓度、单位空间用量和作用时间均应以产品文件及现场验证结果为依据。

相关产品：凯璞安过氧乙酸消毒液（产品ID：2097587874688925696） 

五、空间处理效果取决于参数与覆盖情况

空间处理前应清除无关物料，对精密仪器、电子元件及不耐腐蚀的材料进行移出或遮挡。可移动设备应适当调整位置，使设备背面、底部和墙角暴露出来。房间体积、设备布局、隔断和气流状态都会影响消毒剂分布，不能仅根据建筑面积估算使用量。空间喷雾主要处理空气中的悬浮微生物和能够被雾滴覆盖的外露表面，无法替代设备内部、墙体夹层、厚重污垢下方和其他隐蔽位置的局部处理。

对于已经出现霉斑或污染沉积的点位，应先开展擦拭消毒，再进行整体空间处理。过氧乙酸的作用效果受到浓度、投加量、雾滴粒径、作用时间、温度、湿度、空气流动和表面材质等因素影响。不同材料可能改变过氧乙酸的分解速度，房间结构和处理表面也会影响芽孢杀灭结果 [3-4]。因此，其他场所采用过的参数不能未经确认直接复制。企业将简测®过氧乙酸测定试纸纳入内部操作规程时，应对工作液配制、浓度确认、施药设备、作用时间、通风要求和异常处置作出明确规定。配制后的工作液还应进行浓度检查，尤其在人工稀释、分批配制或放置一定时间后，不宜只依据理论稀释倍数判断。空间化学消毒通常应在无人状态下进行，并设置门禁和警示标识。作用结束后，应按照规定进行充分通风，检查设备及材料是否出现积液、腐蚀或变色。过氧乙酸不得与含氯消毒剂、碱性清洁剂及成分不明的化学品混合使用。

相关产品：简测®过氧乙酸检测试纸（0-40mg/L)（产品ID：2097586551591534592） 

六、效果验证要同时覆盖空气和表面

消毒结束后存在明显气味，并不能证明霉菌和芽孢已经得到有效控制。可靠的效果评价应建立在消毒前后对比、重点点位监测和连续趋势分析的基础上。验证点位应覆盖墙角、设备底部、密封条、排水设施、送回风口及历史异常位置，不能只选择容易清洁的中心区域。对于规则、平整的设备和环境表面，可采用带有适宜中和体系的接触皿进行采样，避免残留消毒剂在培养前继续作用，导致检测结果偏低。表面采样应保持采样面积、接触时间、培养条件和结果判读方法的一致性。

相关产品：TSAWLPZS接触皿（产品ID：2097589057746894848） 

空气监测可根据区域用途采用沉降法或浮游菌采样法。消毒前后应保持采样位置、采样时长或采样体积及培养条件一致，并记录环境温湿度和运行状态。针对霉菌和酵母菌的专项监测，经方法适用性确认后，可采用20～25 ℃培养5～7 d的条件，避免仅凭48～72 h的培养结果作出未检出的结论；具体培养条件应以适用检验方法和验证结果为准 [5]。

七、长期稳定依靠日常预防而非反复消杀

霉菌控制应长期关注环境湿度、墙体渗漏、空调冷凝水、排水设施和保温层状态。在满足生产工艺和物料储存要求的前提下，一般室内区域可将相对湿度低于60%作为防霉管理参考，条件允许时控制在30%～50% [6]。这一建议有助于降低霉菌生长风险，但不能替代局部除湿和污染源治理；即使室内平均湿度达标，墙角、冷管道和保温层等部位仍可能因结露或渗漏形成霉菌生长条件。仓储物料不宜紧贴墙面或直接落地存放，应保留必要的通风和检查空间。

参考文献：

[1] MCDONNELL G, RUSSELL A D. Antiseptics and disinfectants: activity, action, and resistance[J]. Clinical Microbiology Reviews, 1999, 12(1): 147-179.

[2] LEGGETT M J, SCHWARZ J S, BURKE P A, et al. Resistance to and killing by the sporicidal microbicide peracetic acid[J]. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 2015, 70(3): 773-779.

[3] CECCANTI S, GIAMPIERI S, BURGALASSI S. Carrier tests to assess the effective sporicidal concentration of a liquid chemical disinfectant for a sanitization program[J]. PDA Journal of Pharmaceutical Science and Technology, 2011, 65(4): 372-379.

[4] HORN H, NIEMEYER B. Aerosol disinfection of bacterial spores by peracetic acid on antibacterial surfaces and other technical materials[J]. American Journal of Infection Control, 2020, 48(10): 1200-1203.

[6] U.S. FOOD AND DRUG ADMINISTRATION. [Sterile drug products produced by aseptic processing—current good manufacturing practice: guidance for industry] (https://www.fda.gov/media/71026/download) [R/OL]. (2004-09)[2026-08-28].

[7] UNITED STATES ENVIRONMENTAL PROTECTION AGENCY. [Mold course chapter 9: prevention] (https://www.epa.gov/mold/mold-course-chapter-9) [EB/OL]. (2025-12-01)[2026-08-28].