噬菌体制造革命:无细胞合成与定向进化技术打造高效生产新纪元

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来源:刘鸣
2024-11-29 08:40:04
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核心提示:基于无细胞合成体系可以实现M13噬菌体的快速进化及筛选。

无细胞合成M13噬菌体

M13噬菌体仅包含11个基因,合成相对简单。因此作者假设可以在体外无细胞条件环境下实现噬菌体组装(cell-free protein synthesis,CFPS)。因此,研究者提取了大肠杆菌JM109的细胞内容物,通过添加噬菌体颗粒或其基因组DNA来合成M13噬菌体(图1A)。结果表明,噬菌体效价随着时间的推移而增加,用基因组DNA实现的效价比用完整颗粒实现的效价更高。但两种方法的合成效率都低于体内合成,12小时时滴度稳定在105噬菌斑形成单位pfu/ml(图1B),无法满足定向进化的需求。

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改进无细胞合成系统

鉴于与完整颗粒相比,使用基因组DNA的CFPS系统表现更好,研究者测定了用于大规模噬菌体生成的基因组DNA的最佳浓度。结果显示,在浓度为100 ng/μl时系统达到稳定水平(图1C)。为了进一步提高噬菌体体外合成的效率,研究者根据以往的报道对噬菌体基因组进行了简化,以减轻不必要的基因表达的压力。研究者构建了修饰辅助噬菌体(helper phage,HP)质粒(M13KO7-ΔPS-ΔgIII-ΔgVI)包含卡那霉素抗性基因和几乎所有繁殖所需的基因。结果表明,简化后的噬菌粒显着提高了噬菌体的生产速度和产量。滴度在3小时内达到108 pfu/ml,明显快于体内生成(图1D)。为了最大限度地利用宿主细胞中的物质资源,研究者将pUC19质粒中的高拷贝复制起点(origin of replication,ori)pMB1插入HP中,以增加细胞裂解液中噬菌体增殖所需产物的比例。结果显示,携带pMB1可以使无细胞系统中M13噬菌体的滴度达到109 pfu/ml以上的水平,仅略低于体内产量(图 1E)。此外,无细胞系统中的噬菌体生成率比体内高出两到三倍(图1E)。

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图1:优化无细胞噬菌体生产系统以实现稳健的噬菌体制备[1]

开发液滴中的无细胞噬菌体辅助进化(phage-assisted evolution,PAE)方法

上述构建的CFPS系统虽然实现了M13噬菌体的快速高效制备,但由于缺乏进化环境,仍不适合用于定向进化。为了实现进化以供筛选,研究者将GFP基因插入噬菌粒中以可视化噬菌体合成(图2A)。选择最佳浓度1.5-2.5 ng/ml噬菌粒与大肠杆菌JM109的细胞内容物一起嵌入微滴,使10-20%的液滴含有噬菌体产物,以避免多克隆干扰(图2B)。为了测试噬菌体生成的液滴分选的效率,研究者将带有或不带有GFP基因的噬菌粒均匀混合,然后将混合物添加到无细胞系统中进行液滴制备。大约六分之一的液滴表现出GFP荧光,证实含有GFP基因的噬菌粒可以有效地产生荧光蛋白。当通过分选时,几乎所有分选的液滴都表现出绿色荧光,表明这些液滴含有带有GFP的噬菌粒(图2C、D)。

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图2:开发液滴中的无细胞噬菌体辅助进化方法[1]

用于筛选抑制tRNA的无细胞PAE

为了验证无细胞PAE方法的效率,研究者重点研究了抑制tRNA,这是一种可以识别终止密码子以继续合成多肽链的特定tRNA。在噬菌粒的gVI和GFP中引入了色氨酸无义突变(UGG>UGA)作为抑制tRNA活性的传感器(图3A)。在分选前后,有两个TrpT突变(MUT1和MUT2)显着上调。MUT1在未分选的样品中表现出约10000倍的富集,在分选的样品中表现出大于90000倍的富集(占样品的约8.0%)(图3C)。然而,MUT2在未分选的样本中表现出约340倍的富集,在分选的样本中表现出约310倍的富集(占样本的约3.9%)(图3C)。这些结果表明,与MUT2相比,MUT1作为色氨酸抑制tRNA具有更高的性能,并且FADS可以帮助进一步提高无细胞系统中定向进化的效率。

通过测定M13噬菌体的滴度来验证TrpT MUT1抑制 tRNA 的活性可以发现,通过读取终止密码子UGA,这些色氨酸tRNA突变产生的噬菌体数量是野生型的100倍以上(图3D)。使用带有GFP色氨酸无义突变的双荧光蛋白报告系统来检测进化tRNA的活性可以发现,进化tRNA的GFP/RFP强度比野生型高八倍以上(图3D)。这些结果表明,优化后的无细胞噬菌体生产系统可以有效筛选高性能突变体。

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图3:使用无细胞噬菌体辅助进化筛选色氨酸抑制 tRNA(TrpT)[1]

结论

基于CFPS平台,这项研究实现了两个关键目标。首先,构建了目前最佳的M13噬菌体无细胞合成系统,从而能够快速、大量地生成M13噬菌体及其突变体文库。其次,在液滴中开发了一种多功能无细胞PAE系统,擅长筛选性能增强的定向突变体。综上所述,这种基于无细胞系统的新型M13噬菌体合成技术代表了噬菌体应用技术的巨大飞跃。它的实用性和易用性克服了对细胞宿主的传统依赖,使其成为一种变革性工具。

参考文献:

1. Xu B, Liu LH, Lin H, Zhang Y, Huang Y, He Q, Wang F, Wu YR, Zhang Z, Jiang A. A cell-free bacteriophage synthesis system for directed evolution. Trends Biotechnol. 2024 Oct 26:S0167-7799(24)00287-7. doi: 10.1016/j.tibtech.2024.10.005. Epub ahead of print. PMID: 39462751.

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