新型温和型大肠杆菌噬菌体phiStx2k的发现与特性研究

新型温和型大肠杆菌噬菌体phiStx2k的发现与特性研究

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来源:黄浪萍
2025-05-29 10:45:06
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核心提示:噬菌体能够通过溶原化将非产毒大肠杆菌转化为产Stx2k菌株,揭示了水平基因转移在STEC进化中的重要作用。

产志贺毒素大肠杆菌Shiga toxin-producing Escherichia coli, STEC)是一种重要的人畜共患病原体,可引发水样或血性腹泻、出血性结肠炎,甚至致命的溶血性尿毒综合征(HUS)。其核心毒力因子志贺毒素(Shiga toxin, Stx)由溶原性噬菌体编码,并通过水平基因转移在不同菌株间传播。近年来,中国首次报道了新型Stx2k亚型毒素,但其相关噬菌体的生物学特性尚未明确。本研究从临床分离的Stx2k阳性大肠杆菌中诱导出一种新型温和噬菌体phiStx2k,并系统解析其形态、基因组特征及毒素基因转移能力,为理解STEC的进化机制和公共卫生风险提供了重要依据。

phiStx2k从患者来源的STEC1575菌株中诱导获得。实验采用大肠杆菌K-12衍生菌株MC1061作为宿主,通过丝裂霉素C0.5 μg/mL)处理18小时诱导噬菌体释放。裂解液经0.22 μm滤膜过滤后,通过双层琼脂法纯化5次,最终获得单一噬菌体克隆。透射电镜观察显示,phiStx2k具有典型的二十面体头部(直径约54 nm)和长非收缩性尾部(长度149 nm),其形态特征显著区别于已知的短尾Stx2a噬菌体Sp5

基因组注释显示,phiStx2k包含80个开放阅读框(ORF)和3tRNA基因(补充表S2)。功能模块分为整合、DNA包装与复制、调控、毒性、细菌裂解和形态发生(图3A)。值得注意的是,其调控模块与已知的13种肠出血性大肠杆菌噬菌体复制单元(Eru)无同源性,表明phiStx2k携带一种新型调控机制。

噬菌体整合至宿主染色体tRNA-二氢尿苷合成酶基因(dusA)中,左右两侧附着位点(attLattR)均包含7 bp核心序列“ATGCTCG”(图3C)。这一序列与噬菌体附着位点attP完全一致,暗示其通过位点特异性重组完成整合。此外,基因组末端分析揭示了12 bp5’黏性末端(5’-GGGCGGCGACCT-3’),提示其采用cos包装机制。基于主要衣壳蛋白(MCP)和末端酶大亚基(TerL)的系统发育分析显示,phiStx2k与大肠杆菌噬菌体ev243ev2071H2亲缘关系较近。全基因组比对表明,其与最接近的大肠杆菌噬菌体2H10GenBank NC_049950)的核苷酸一致性为97.86%,但覆盖度仅61%,核苷酸基因组相似性(NIS)为60%。根据国际病毒分类委员会(ICTV)标准,若两噬菌体全基因组序列一致性低于70%,则分属不同属。因此,phiStx2k被归类为Caudoviricetes类下的一个新属。为评估phiStx2k转化非产毒菌株的能力,研究测试了包括MC1061DH5αC600等在内的6种大肠杆菌K-12菌株。噬菌体悬液(10⁶ PFU/mL)与宿主菌共培养后,通过PCR和溶原稳定性实验验证转化效率。结果显示,除ATCC 25922外,其余菌株均成功建立稳定溶原状态。

通过RT-qPCRVero细胞毒性实验证实,溶原菌在丝裂霉素C诱导下可显著上调stx2k基因表达,并产生功能性Shiga毒素。这一结果首次证明phiStx2k具备将非致病性大肠杆菌转化为产Stx2k菌株的能力,凸显其潜在的流行病学风险。

phiStx2k的发现填补了Stx2k噬菌体研究的空白。其独特的调控模块和整合位点提示,Stx噬菌体在进化中可能通过重组获得多样化调控机制,以适应不同宿主环境。此外,基因组中携带的tRNA基因可能增强其对宿主的适应性,促进毒素基因的水平传播。

参考文献:

Yang Xi, Sui Xinxia, Liu Qian, et al. Characterization of the novel temperate Escherichia coli phage phiStx2k[J]. Archives of Virology, 2023,169(1).

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噬菌体
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