益生菌的“超级赛亚人”变身记——体内进化让降脂效果翻倍

原创
来源:黄心怡
2026-08-20 17:27:45
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核心提示:将无菌小鼠肠道作为“活体生物反应器”,利用高脂饮食诱导的胆汁酸压力驱动益生菌体内进化。经7周定向进化,动物双歧杆菌乳亚种变异株的胆汁酸代谢能力提升77%。两个关键单核苷酸变异分别增强了胆盐水解酶基因转录和胆汁酸外排转运蛋白功能。在NAFLD小鼠模型中,该变异株改善胆汁酸稳态和肝脏脂肪变性的效果显著优于原始菌株。

益生菌功能提升面临两大挑战:一是体外适应性进化虽能施加选择压力,却无法模拟肠道内免疫、营养与宿主信号的复杂互作,导致筛选菌株回归宿主后难以复现功能优势;二是CRISPR基因编辑虽精准,但受限于多数益生菌遗传可操作性低及工程菌株的监管障碍。研究团队由此提出新假设:将宿主肠道作为活体进化反应器,利用肠道内源性选择压力驱动益生菌的功能优化。这一策略绕开了体外环境的局限和基因编辑的技术门槛,为益生菌的功能增强开辟了新的可能路径。

 体内进化实验设计:肠道作为活体反应器

研究团队首先从12株动物双歧杆菌乳亚种中筛选出胆汁酸代谢能力最强的菌株H22B656作为起始菌株。随后,他们将该菌株定植到无菌小鼠肠道中,并逐步增加饮食中的脂肪含量,从30%45%再到60%,以逐步提升肠道胆汁酸压力。为了验证体内进化的必要性,研究者设置了对照实验:在体外将同一菌株在含0.3%结合胆汁酸的培养基中连续传代10次。结果,体外传代未能产生任何一株胆汁酸代谢能力提升的菌株。而在体内进化的7周过程中,从不同时间点分离的菌株中,25%的克隆出现了胆盐水解酶比活性的显著提升,其中最优变异株WSS9的比活性提升了77%

1 体外与体内诱导策略对提升胆汁酸代谢能力的比较效果研究

 遗传解析:锁定两个关键突变

研究者对变异株WSS9进行了全基因组重测序和转录组分析。通过与原始菌株比对,共鉴定出282个高置信度单核苷酸变异——其中244个位于编码区(205个非同义突变),38个位于非编码区。在这282个变异中,研究者锁定了两个与胆汁酸代谢直接相关的关键突变:

突变一(rs1846941):位于胆盐水解酶基因cbh的上游非编码区。该突变增强了cbh在胆汁酸压力下的转录表达。通过构建携带该突变启动子的报告基因载体,研究者证实该突变使mCherry荧光强度在三种胆汁酸条件下分别提高1.30倍、1.71倍和12.36倍。

突变二(rs402499):位于胆汁酸外排转运蛋白基因mdr的编码区,导致第192位氨基酸从天冬酰胺(Asn)变为天冬氨酸(Asp, N192D)。该突变既增强了mdr在胆汁酸压力下的表达,又通过改变蛋白构象提高了与底物的结合亲和力,且形成更多氢键。

 

2 驱动适应菌株WSS9胆汁酸代谢增强的两个关键SNV的功能验证

功能验证:变异株在NAFLD模型中表现更优

研究者随后在高脂饮食诱导的非酒精性脂肪性肝病(NAFLD)小鼠模型中,比较了变异株WSS9与原始菌株H22B656的干预效果。结果显示:WSS9对高脂饮食诱导的体重增加的抑制率达33.6%(原始菌株仅30.3%)。在血清指标方面,WSS9在升高高密度脂蛋白胆固醇、降低总胆固醇和降低丙二醛水平方面均显著优于原始菌株。肝组织HE染色和油红O染色显示,WSS9处理组的肝脏脂肪变性程度明显轻于原始菌株处理组,肝小叶结构基本保持正常。代谢组学分析进一步揭示,WSS9对初级胆汁酸生物合成通路的调节范围比原始菌株更广,除调节GCDCAGCACDCACA外,WSS9还额外调节了TCDCATCAKEGG通路富集分析也显示,WSS9处理组的差异代谢物在初级胆汁酸生物合成通路(K000120)中显著富集(p=0.0357),而原始菌株处理组则未达显著水平。肠道定向进化策略为益生菌的功能优化开辟了一条新路径,将肠道从被动的定植场所转变为主动的进化工厂,也为基于定向进化益生菌的代谢疾病干预提供了概念验证。未来,这套体内进化框架或可推广至更多功能性菌株的精准改造。

参考文献:Han Z, Sun Z, Liu X, et al. Harnessing a germ‑free mouse gut bioreactor for directed evolution of probiotics to combat non-alcoholic fatty liver disease. Nat Commun. 2026 Feb 24;17(1):3133. doi: 10.1038/s41467-026-69823-0. 

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