基于UBI29-41靶向肽的NIR-Ib纳米酶诊疗一体化平台:牙周炎厌氧菌成像与智能抗菌治疗

原创
来源:雷晓旭
2025-05-23 10:39:42
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核心提示:牙周炎是由牙菌斑引发的慢性炎症,需同步实现病灶定位、厌氧微环境改善及抗炎/成骨修复。本研究开发了近红外IIb区响应型纳米酶系统(DMUP),由镧系掺杂下转换纳米颗粒与多酶活性锰基纳米酶组装而成。DMUP通过UBI29-41靶向肽结合致病菌,NIR-IIb荧光定位感染区,响应炎症微环境释放锰纳米酶与丹皮酚(Pae)。锰酶催化H2O2产氧抑制厌氧菌,并通过SOD/CAT级联清除ROS;Pae经Akt/mTOR通路调控巨噬细胞M2极化,协同锰酶减轻炎症并促进成骨基因表达,实现牙周组织再生。

牙周炎是由牙菌斑引起的慢性炎症性疾病,全球患者超7亿,其治疗需综合解决病灶定位、厌氧菌抑制及炎症微环境调控等难题。传统治疗手段包括龈上洁治(清除牙菌斑及牙结石)、龈下刮治(深入牙周袋清除感染源)、抗生素(如甲硝唑、阿莫西林)及牙周手术(翻瓣术、植骨术等),但存在牙周袋结构复杂导致清创不彻底、抗生素对深部厌氧菌抑制效果差、无法逆转骨吸收等问题。近年来,纳米技术的应用为牙周炎治疗提供了新思路:例如基于液态金属镓的纳米药物(GaNC)通过光热激活实现抗菌与成骨双重功效,抑制牙龈卟啉单胞菌并促进干细胞成骨分化;近红外II区(NIR-IIb)响应型纳米酶系统(如DMUP)利用镧系掺杂下转换纳米颗粒实现高穿透深度的细菌荧光成像,并结合锰基纳米酶催化H2O2产氧改善缺氧环境、清除活性氧(ROS),协同丹皮酚(Pae)调控巨噬细胞M2极化减轻炎症,促进成骨基因(Runx2OCN)表达。此外,近红外光响应型纳米酶(如Ag2S/Ag3PO4复合材料)通过光热效应及级联催化产生活性氧高效杀灭耐药菌,并在钛植入物表面形成抗菌涂层预防感染复发。这些创新技术整合了病灶可视化、微环境调控与组织再生功能,突破了传统疗法的局限性。本研究开发了一种近红外IIb区(NIR-IIb)响应型多功能纳米酶系统(DMUP)(原理如Fig. 1所示),整合细菌成像、抗厌氧菌、抗炎及促骨再生功能。

Figure 1  DMUP的示意结构和工作原理DMUP的示意结构和工作原理。(a) DMUP的形成。(b)细菌成像流程。(c)巨噬细胞的转化。

DMUP纳米酶平台的合成通过多步骤实现功能集成,其合成原理如Fig. 2所示:首先采用热分解法制备核壳结构镧系掺杂下转换纳米颗粒(DCNPs),其粒径约35 nm并具备NIR-IIb区(1500-1600 nm)荧光特性;随后包覆介孔二氧化硅(mSiO2)形成亲水性载体DCMS,并通过ZIF-8金属有机框架在孔道内沉淀具有带状结构的锰基纳米酶(以四方晶系β-MnO₂为主,XRDXPS证实Mn⁴⁺氧化态),赋予其类CAT/SOD级联催化活性;接着利用硫酯化反应将靶向肽UBI29-41共价修饰于载体表面(分子对接验证酰胺键稳定性),并通过π-π作用负载丹皮酚(Pae),最终形成多功能复合体系DMUP。该平台通过酸性微环境触发ZIF-8框架解体,释放Mn纳米酶与Pae,同时利用Mn纳米酶的广谱近红外吸收与DCNPs荧光间的FRET效应实现感染区域的可视化定位(荧光淬灭效率94%,释放后恢复率与H⁺浓度线性相关)。材料表征(TEM/SEM、元素映射、FTIRICP-MS)证实各组分的精确负载与结构稳定性,为牙周炎诊疗提供成像-抗菌-抗炎-成骨一体化的纳米解决方案。

Figure 2  DMUP的合成示意图。

DMUP纳米酶平台通过多模态协同机制实现牙周炎精准诊疗:在病理微环境中,其酸性响应型ZIF-8框架解离释放锰纳米酶(Mn nanozyme)与丹皮酚(Pae),其中Mn纳米酶表现出类过氧化氢酶(CAT)和超氧化物歧化酶(SOD)的级联催化活性,通过电子自旋共振(ESR)验证可高效清除·OH·O₂⁻H₂O₂(清除率>85%),并催化H₂O₂分解产氧(O2产率3.2 μmol/min/mg),显著改善组织缺氧状态([Ru(dpp)3]Cl2探针显示缺氧相关红色荧光衰减率达78%)。同时,表面修饰的UBI29-41靶向肽通过静电吸附细菌膜磷脂酰甘油(SEM显示其可特异性结合牙龈卟啉单胞菌、大肠杆菌金黄色葡萄球菌)(Fig. 3b − d),UBI29 − 41可以通过表面接枝被DMUP特异性靶向到细菌表面(Fig. 3a)。在近红外II区成像中,DMUP200 μg/mL)对104-109 CFU/mL细菌浓度呈现荧光强度正相关性(R²=0.97),检测限低至104 CFU/mL,且与细菌共孵育10分钟即可完成靶向标记(FITC荧光示踪证实)。动物实验表明,该平台能穿透牙周袋复杂解剖结构实现病灶定位,其荧光强度与抗菌效果呈负相关(抑菌率>90%);进一步通过SD大鼠腿部肌肉感染模型(模拟牙周缺氧、ROS过载及混合菌群环境)验证,注射500 μL DMUP后,NIR-II荧光信号与细菌浓度(106-10¹¹ CFU/mL)呈显著剂量依赖性(R²=0.94)。生物安全性评估显示,DMUP200 μg/mL浓度下对RAW264.7巨噬细胞存活率无影响(CCK-8>95%),且通过协同Pae调控Akt/mTOR通路促进巨噬细胞M2极化(M1/M2比例从4.7降至1.2),降低促炎因子IL-6TNF-α表达(下降68%),同时上调成骨基因Runx2OCN2.3倍)。

Figure 3  (a) DMUP靶向细菌和酸响应荧光成像的示意图。代表性扫描电镜(SEM)图像显示DMUP靶向 (b) P. gingivalis, (c) E. coli (d) S. aureus

该研究同时探讨了DMUP对牙周炎致病菌的抗菌及抗生物膜活性,结果显示DMUP对厌氧菌(如牙龈卟啉单胞菌)的抑制效果显著优于需氧菌(如金黄色葡萄球菌)和兼性厌氧菌(如大肠杆菌),其最小抑菌浓度分别为200 µg/mL(牙龈卟啉单胞菌)和1600 µg/mL(大肠杆菌),而对需氧菌无明显抑制;通过扫描电镜观察到200 µg/mL DMUP可破坏细菌细胞膜结构,对牙龈卟啉单胞菌、大肠杆菌和金黄色葡萄球菌的杀菌率分别为99.9%95.7%63.5%,并显著抑制牙龈卟啉单胞菌生物膜形成(去除率96%),机制涉及抑制菌毛蛋白AfimA)、牙龈蛋白酶(kgprgpArgpB)等毒力基因表达,导致细菌膜破裂(收缩程度如Fig. 4所示)及蛋白泄漏;其针对厌氧菌的高效抗菌性能(优于传统药物MC)与牙周炎以厌氧菌主导的病理特征高度契合,验证了DMUP在牙周炎治疗中的应用潜力。

Figure 4  与牙周致病菌P. gingivalis、大肠杆菌E. coli和金黄色葡萄球菌S. aureus共同培养后,代表性板图像和扫描电子显微镜(SEM)图像。

研究人员通过体外体内实验综合评价了DMUP的抗炎作用:体外实验显示,DMUP200 µg/mL)通过清除过量ROS抑制NF-κB/MAPK信号通路活化,显著下调LPS诱导的RAW264.7巨噬细胞中促炎因子TNF-αIL-1βIL-6的基因表达并上调抗炎因子TGF-β(流程如Fig. 5a所示),同时促进巨噬细胞表型由促炎型(M1,标志物iNOSCD86)向抗炎型(M2,标志物Arg-1CD206)转换,其机制源于Mn纳米酶(模拟SOD/CAT活性调控氧化还原平衡)与多酚类抗氧化剂(Pae)的协同作用;体内实验在大鼠细菌性牙周炎模型中证实(Fig. 5b),DMUP可降低牙周袋pH6.5,显著减少牙龈出血、炎症细胞浸润及促炎因子(IL-6IL-1βTNF-α)表达,同时上调抗炎因子IL-10并促进胶原沉积,Micro-CT及组织学分析显示DMUP有效抑制牙槽骨吸收(缩短ABC-CEJ距离),增加骨体积分数(BV/TV)、骨小梁厚度(Tb.Th)及骨密度(BMD),并通过上调成骨标志物OCNRunx2表达增强骨再生,其疗效优于传统药物MC组,且血液学及器官病理学检测证实DMUP体内应用安全无毒性,综合表明DMUP通过多靶点抗炎-免疫调节-成骨协同作用实现牙周炎高效治疗。

Figure 5 (a) 诱导炎症RAW264.7细胞的示意图,以及抗炎和诱导自噬。(b) SD大鼠的左上颌侧进行牙周炎建模的示意图。

本研究开发了一种近红外IIb响应型多功能纳米酶平台(DMUP),通过酸性环境触发释放锰纳米酶催化内源性H2O2产氧,并与多酚抗氧化剂(Pae)协同调控巨噬细胞功能,实现牙周炎的多模态精准治疗。该平台整合细菌成像、抗厌氧菌(如牙龈卟啉单胞菌)、抗炎(抑制NF-κB/MAPK通路及促炎因子TNF-α/IL-6/IL-1β)及促骨再生(上调OCN/Runx2)功能,在动物模型中有效定位感染灶并降低炎症因子水平,显著改善牙槽骨吸收和胶原流失,且在大鼠腿部感染模型中验证其跨组织成像潜力,为植入物、人工关节等细菌感染疾病的靶向治疗提供新策略。尽管面临材料合成复杂、规模化生产挑战及临床需联合洁治等局限性,其成像-治疗一体化设计在感染性疾病诊疗中展现出重要应用价值,未来可通过优化合成工艺与验证复杂菌群协同疗效进一步推进转化。

原文doihttps://doi.or g/10.1186/s12951-025-03270-9

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