金顶侧耳新发现:一种多糖竟能高效促进益生菌生长!

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来源:糖赢划案
2026-09-24 11:36:13
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核心提示:2026 年《Carbohydrate Polymers》一项以金顶侧耳(榆黄蘑)为对象的研究,系统解析其子实体水不溶性 (1→3)-α-D - 葡聚糖结构,通过部分酸水解将其转化为葡寡糖,体外实验证实该葡寡糖具备优良益生元活性,研究范式可为食用菌多糖开发与新型益生元创制提供参考。

这篇发表在2026年389/125624《Carbohydrate Polymers》上的研究,以金顶侧耳(榆黄蘑)为对象,系统揭示了其细胞壁中一种水不溶性多糖的结构,并创新性地将其转化为具有高效益生元潜力的葡寡糖。

 

(一)主要研究思路

该研究遵循了一条从“结构解析”到“功能验证”的清晰路径:

 


目标锁定:聚焦于金顶侧耳中研究相对较少的水不溶性多糖组分,而非已被广泛研究的水溶性多糖。

结构鉴定:首先从金顶侧耳子实体中分离纯化出目标多糖(W-IP),并利用多种现代分析技术,全面、系统地解析其化学结构、糖苷键连接方式和分子量。

功能转化:通过部分酸水解,将大分子、难消化的多糖降解为小分子的葡寡糖(GOS)混合物。

活性评估:将获得的GOS作为潜在益生元,通过体外发酵实验,评估其对多种常见益生菌(如乳杆菌、双歧杆菌)的促生长效果,并与市售益生元(低聚果糖、菊粉)进行对比,验证其益生元潜力。

 

(二)研究方法

研究综合运用了多种化学、物理和生物学方法,确保了结论的可靠性:

(1)多糖分离纯化:采用碱提法(1 M NaOH)从金顶侧耳干粉中提取水不溶性多糖,并通过离心、透析、冻干等步骤进行纯化。

 

从P. citrinopileatus子实体中分离出的水不溶性多糖(W-IP)的 GPC 色谱图。分离过程采用Sepharose CL-6B层析柱进行,以1 M氢氧化钠作为洗脱液。V₀——空体积;V_p——总渗透体积

 

结构分析技术:

(2)免疫荧光标记:使用特异性抗体在菌丝体上原位验证(1→3)-α-D-葡聚糖的存在。

 

P. citrinopileatus营养型菌丝的显微图像(40倍放大):(A)——光学显微镜图像;(B)——使用荧光染料(Alexa Fluor 488)对特异性结合于(1→3)-α-D-葡聚糖的抗体系统进行激发后的同一图像。比例尺对应为20 μm。

 

(3)化学分析:通过气相色谱-质谱联用(GC-MS)进行单糖组成和糖苷键连接方式分析。

 

P. citrinopileatus子实体的水不溶性多糖(W-IP)所获得的糖衍生物的气相色谱图(GC);缩写:Xyl——木糖,Glc——葡萄糖,Man——甘露糖,IS——内标(m-肌醇)

 

(4)波谱分析:利用傅里叶变换红外光谱(FT-IR)、拉曼光谱(Raman)和二维核磁共振(2D NMR)技术,精确解析多糖的官能团和精细结构。

 

P. citrinopileatus子实体中分离出的水不溶性多糖(W-IP)的FT-IR(A)与Raman(B)光谱

 

 

W-IP(1.0 M NaOD溶于D₂O)的核磁共振谱图。从上至下依次为:¹H NMR谱;COSY谱以及部分 TOCSY 和 NOESY 相关谱,其中涉及(1→3)-α-D-葡聚糖葡萄糖残基的异头质子信号。每个峰上标注了与(1→3)-α-D-葡聚糖碳原子相连的质子数量,以标示其位置。自旋系统A按以下方式标记:H1、H1/1、H1/2等。来源不明的异头信号(见正文)标记为BH1。

 

(5)分子量测定:使用凝胶渗透色谱(GPC)测定多糖的平均分子量。

(6) 形貌观察:通过扫描电子显微镜(SEM)观察多糖的微观形态。

 

P. citrinopileatus子实体水不溶性多糖(W-IP)的SEM图像:(a) ×100,(b) ×300,(c) ×600,(d) ×1,510,(e) ×2,940,(f) ×20,000 倍数

 

功能验证方法:

(1)酸水解:使用稀硫酸对多糖进行部分水解,制备葡寡糖(GOS)。

 

通过对P. citrinopileatus的水不溶性(1→3)-α-D-葡聚糖进行部分酸水解的(1→3)-α-D-低聚葡萄糖的HPLC 谱图。G1–G9——表示葡萄糖亚基的数

 

(2) 高效液相色谱(HPLC):分析GOS混合物的聚合度分布。

 

不同乳酸杆菌菌株添加了1% α-(1→3)-低聚糖(α-(1→3)-GOS)、果寡糖(FOS),以及浓度为0.35%葡萄糖(该浓度值与1% α-(1→3)-GOS制剂中的葡萄糖浓度相对应)基础培养基中生长曲线。细菌数量以光密度(OD600)变化值表示。

 

(3)体外发酵实验:使用Bioscreen C全自动生长曲线分析仪,监测多种益生菌在添加GOS的培养基中的生长情况(OD600值),以评估其益生元活性。

 

不同双歧杆菌菌株在基础培养基中添加以下成分时的生长曲线:添加1%  α-(1→3)-低聚糖(α-(1→3)-GOS)、果寡糖(FOS)、0.35%的葡萄糖(该浓度值与1%  α-(1→3)-GOS)制剂中的葡萄糖浓度相对应)。细菌数量以光密度(OD600)的变化值表示

 

(三)创新点

研究对象创新:首次系统性地对金顶侧耳中的水不溶性(1→3)-α-D-葡聚糖进行了完整的结构表征,填补了该物种多糖研究的空白。

功能发现创新:创新性地提出将该结构明确的多糖作为原料,通过酸水解制备新型葡寡糖(GOS),并首次证实了其具有优于或相当于传统益生元(FOS、菊粉)的促益生菌生长活性,特别是对乳杆菌和双歧杆菌有显著的“双歧因子”效应。

技术联用创新:研究结合了免疫荧光、多种波谱技术和体外发酵模型,从分子结构到生物功能进行了多维度、跨学科的验证,使得研究结论非常扎实。

 

(四)可借鉴之处

研究范式:为天然产物(尤其是食用菌多糖)的研究提供了一个优秀的范本,即“分离纯化 → 结构解析 → 改性/降解 → 功能评价”。

分析技术组合:在多糖结构鉴定中,联合使用GC-MS、NMR、FT-IR等多种技术进行相互印证,是确保结构解析准确性的黄金标准。

功能评价模型:采用多种益生菌菌株进行体外发酵实验,并与商业化益生元进行平行对照,这种评价方式科学、严谨,结果更具说服力。

 

(五) 研究启发

副产物高值化利用:该研究启发我们,食用菌生产过程中可能被视为“废料”的菌渣或子实体中的不溶性部分,可能富含高价值的生物活性物质,值得深入挖掘。

新型益生元开发:自然界中存在大量结构多样的多糖,通过酶法或酸法降解,是开发具有特定功能(如选择性促进特定益生菌)的新型益生元的有效策略。

精准营养方向:不同结构的寡糖对不同菌株的促生长效果存在差异,这为未来开发针对特定肠道菌群失调问题的“精准益生元”或“合生元”产品提供了思路。

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